- 1 Pour plus d’information, voir également le site internet de Kilalo Press [En ligne] URL : https://k (...)
1En 2023, environ 9 % de la population dans le monde sont en situation d’insécurité alimentaire modérée ou sévère, en Afrique centrale et en Asie du Sud, 10 à 30 % des enfants souffrent de malnutrition protéique (FAO, 2024 ; Wu et al., 2014). Selon un rapport du Programme alimentaire mondial (PAM) sur la République démocratique du Congo, 27,3 millions de personnes ont besoin d’une aide alimentaire d’urgence (WFP, 2021), ce qui sous‑entend qu’elles manquent de protéines et d’énergie. Étant donné la multiplication des conflits et la croissance démographique importante, une nouvelle phase de transition alimentaire s’impose. Les champignons comestibles peuvent permettre de lutter contre l’insécurité alimentaire, car ils constituent de bons substituts des produits d’origine animale comme la viande, les œufs et le lait qui ne sont pas à la portée de toutes les populations (Oei, 1993 ; Tounkara et al., 2017)1. Au Congo, comme dans beaucoup de pays du monde, les champignons comestibles sont utilisés comme aliments. Ils sont intéressants tant au niveau gustatif qu’au niveau nutritif. Les archives archéologiques montrent que les populations chiliennes, il y a 13 000 ans consommaient souvent des champignons (Rojas et Mansur, 1995). Une revue de littérature décrit déjà en 1993 l’usage et l’importance des champignons sauvages comestibles pour les régimes alimentaires des populations locales d’Afrique subsaharienne (Rammeloo et Walleyn, 1993).
- 2 Pour plus d’information, voir le site internet de Le Quotidien du Peuple [En ligne] URL : http://fr (...)
2Les champignons se développent naturellement dans les écosystèmes terrestres, mais leur utilisation par les populations reste faible. Par exemple, en Afrique subsaharienne, environ 551 espèces de champignons sauvages comestibles ont été identifiées (Boa, 2006), mais seulement dix espèces ont été répertoriées comme étant consommées par la population de Walungu (Mweze et al., 2020). Dans la cité de Kimvula (Congo central), des souches de 12 espèces de champignons lignicoles comestibles ont, quant à elles, été isolées (Dibaluka et al., 2010). La domestication d’un certain nombre de ces champignons comestibles est une opportunité pour avoir accès à des aliments nutritifs, en quantité suffisante, toute l’année. Cette pratique est courante en Chine, lieu d’origine de plus de dix espèces de champignons comestibles cultivés dans le monde, donnant lieu à une réelle collaboration du gouvernement rwandais et de la République populaire de Chine qui a permis, à une grande partie de la population rwandaise, de domestiquer de champignons comestibles (Ntakirutimana, 2011)2. La culture des champignons est attractive dans les pays en développement parce qu’ils sont facilement cultivés sur des déchets organiques d’origine agricole, des papiers, des journaux pourris, des cartons ou du compost ; des substrats à moindre coût. En même temps, elle procure des revenus et permet la réduction du volume des déchets encombrant notre environnement. Chang et Miles (1989) ont montré qu’en utilisant seulement 25% des pailles céréalières brulées dans le monde, 317 millions de tonnes de champignons frais peuvent être produits par an. Des études expérimentales sur l’utilisation de déchets organiques comme substrats sont encore à déployer en République démocratique du Congo pour produire de nombreux champignons sauvages. Toutefois, certains tests de culture ont été réalisés dans la région de Kinshasa (République démocratique du Congo) sur différents substrats lignocellulosiques (Dibaluka et al., 2010).
3Partant des enjeux évoqués ci-dessus, la présente étude teste l’hypothèse selon laquelle la combinaison de plusieurs substrats de base améliore le rendement en sporophores ; des différences sont observables et mesurables lors de l’incubation des substrats lardés avec les mycéliums de deux espèces de champignons, et la composition chimique des sporophores des deux souches varie en fonction du substrat utilisé. L’objectif poursuivi est la mise au point d’un substrat complexe composé de déchets organiques lignocellulosiques pour mettre en culture deux espèces de champignons comestibles, l’une sauvage, Auricularia cornea Ehrenb, et l’autre exotique adaptée en culture, Pleurotus sajor-caju (Fr.), et évaluer l’adaptation de la première. Les stratégies suivantes ont été proposées : la confection de substrats complexes pour permettre la production efficiente de sporophores, la valorisation des déchets organiques utilisés comme substrat de base, l’évaluation du comportement de ces deux souches sur un substrat complexe et l’évaluation du rendement et de la composition chimique de leurs sporophores en fonction du substrat. L’intérêt est de fournir des données essentielles en ce qui concerne la culture d’Auricularia cornea Ehrenb, espèce de champignon sauvage comestible, sur un substrat complexe.
4Les souches mises en culture sont respectivement les souches 180513 et 1259 d’Auricularia cornea Ehrenb et de Pleurotus sajor-caju (Fr.), préalablement identifiées et isolées au Laboratoire de myciculture et de mycologie systématique, projet Kin‑Champignon de Kinshasa. Le substrat a été choisi en fonction des déchets organiques d’origine agricole et agro-industrielle disponibles à Kinshasa. Ils ont été fournis par des gens ou des entreprises qui les produisent (maisons, vente d’aliments pour volaille ou bétail, et cetera.
5Deux substrats ont été utilisés. Le premier substrat SD1 a été fabriqué à partir des déchets ayant constitué le substrat de base : copeaux de bois, rafles de maïs, marc de café et paille de riz. Trois additifs ont été ajoutés : sciure de bois, son de blé et chaux éteinte. Le second substrat SD2 a été fabriqué à partir de copeaux de bois, de rafles de maïs, de marc de café et de paille de riz. Seulement deux additifs ont été ajoutés : chaux éteinte et sciure de bois. Ce deuxième substrat a été utilisé comme témoin pour mettre en évidence l’apport du son de blé, dont la composition estimée est de 14,5 % de matière azotée, 10,6 % de cellulose, 28,4 % d’hémicellulose et 20,8 % d’amidon (Boudouma, 2009).
Tableau 1. Proportions des ingrédients des substrats
|
Substrat
|
Ingrédients
|
Masse (en g)
|
Proportions (%)
|
|
SD1
|
Copeaux
|
1 000
|
18,5
|
|
Rafles de maïs
|
1 000
|
18,5
|
|
Marc de café
|
1 000
|
18,5
|
|
Paille de riz
|
1 000
|
18,5
|
|
Sciure de bois
|
810,81
|
15
|
|
Chaux éteinte
|
52,63
|
2
|
|
Son de blé
|
157,89
|
9
|
|
Teneur en eau
|
64 %
|
|
|
SD2
|
Copeaux de bois
|
1 000
|
22,5
|
|
Rafles de maïs
|
1 000
|
22,5
|
|
Marc de café
|
1 000
|
22,5
|
|
Paille de riz
|
1 000
|
22,5
|
|
Sciure de bois
|
355,55
|
8
|
|
Chaux éteinte
|
88,88
|
2
|
|
Teneur en eau
|
60 %
|
|
SD1 : substrat complexe supplémenté de son de blé, SD2 : substrat sans son de blé.
Substrat conçu par les auteurs.
6Les copeaux de bois, les rafles de maïs, le marc de café et la paille de riz ont été mis dans des sacs en plastique et trempés, pendant 48 heures, dans un bac rempli d’eau du robinet, avant d’être soumis au compostage pendant deux mois. Le compost obtenu a été essoré avant d’y ajouter les additifs, à savoir la sciure de bois, la chaux éteinte et le son de blé (pour le substrat SD1) dans les proportions indiquées dans le tableau 1. Ces substrats ont été placés dans des sachets transparents en polyéthylène de 29 cm de longueur et 18 cm de largeur, à raison de 500 g ou 600 g par sachet, selon leur destination (culture de la souche locale 180513 d’Auricularia cornea ou culture de la souche exotique 1259 de Pleurotus sajor-caju). Les sachets ont été fermés avec un bouchon en mousse joint d’un anneau en plastique pour empêcher tout contact extérieur avec les substrats. Ils ont ensuite été séchés et stérilisés dans l’autoclave à 120 °C pendant une heure.
7Le blanc de semis (ou mycélium pur) de chaque souche, préparé sur support de semis constitué de sciure de bois, a été fourni par le laboratoire de myciculture de la faculté des Sciences et Technologies de l’université de Kinshasa. Le lardage du substrat a été réalisé 24 h après stérilisation, dans des conditions aseptiques, à raison de 9 % de blanc de semis par sachet de substrat. Les sachets ont ensuite été soumis à l’incubation à l’obscurité totale, dans des armoires d’incubation bien aérées, à la température ambiante (±25 °C), jusqu’à ce qu’ils aient été complètement envahis par le mycélium.
8L’induction de la fructification, lorsque le substrat a été complètement colonisé par le mycélium et qu’il y a eu apparition des primordia, a été réalisée dans une champignonnière (une cabane construite avec des murs en nattes tamisant la lumière). La champignonnière a permis d’assurer des températures modérées (entre 23 °C et 28 °C en journée) et un brassage de l’air uniforme grâce au maintien d’un espace d’aération entre les murs et le toit. En outre, les sachets entaillés ont été humidifiés par un arrosage régulier deux fois par jour. Les mesures contre la contamination ont également été prises en compte.
9Le poids des sporophores récoltés a été évalué à l’aide d’un dynamomètre et le rendement a été calculé à partir de la formule suivante (Makanua et al., 2015 ; Traoré et al., 2022) : rendement de l’efficacité (%) = PT/(PS x PL) x 100 d’où PT = Production totale de sporophores (g) ; PS Masse du substrat (g) ; PL = Masse du lardon
10Les analyses chimiques ont été effectuées au laboratoire de biochimie de la faculté des Sciences et Technologies de l’université de Kinshasa. L’humidité des échantillons a été déterminée par la méthode de perte de poids décrite par Vervack (1982), les protéines brutes selon la méthode de Kjeldhal décrite par Pauwels (1992), les lipides totaux selon la méthode de Soxhlet décrite par Vervack (1982), les fibres brutes selon la méthode de Kruschner décrite par Vervack (1982), la teneur en hydrates de carbone selon la méthode de Favier et al. (1983) et les cendres totales selon la méthode décrite par l’Association officiels des chimistes analytiques (AOAC) (1990).
11Afin de déterminer la valeur énergétique des rendements, la méthode a consisté à additionner les teneurs des autres constituants analysés (protéines brutes, lipides totaux et hydrates de carbone) en appliquant la formule suivante (Merrill et Watt, 1955 ; FAO, 2015) : VE (en Kcal) = (% PB x 4) + (% LT x 9) + (% HC x 4) (VE : valeur énergétique, HC : hydrates de carbone, PB : protéines brutes, LT : lipides totaux)
12La description des données quantitatives a été essentiellement réalisée sur Excel à l’aide des paramètres habituels que sont : la moyenne et l’écart-type. Grâce au logiciel Origin, le test-t de Student a servi à la comparaison des moyennes de nos deux groupes d’échantillons.
13La croissance mycélienne d’Auricularia cornea (souche 180513) a débuté au 7e jour sur les deux substrats, et les boutons fructifères sont apparus au 32e jour. Le substrat SD1 a été totalement envahi, alors que le substrat SD2 a été partiellement envahi. L’apparition des premiers sporophores, constituant la première levée, a été observée entre le 25e et le 27e jour de l’induction fructifère, et l’intervalle entre les deux levées a été de 23 jours. La croissance mycélienne de Pleurotus sajor-caju (souche 1259) a débuté au 3e jour. Les deux substrats ont été totalement envahis par le mycélium de cette espèce. L’apparition des premiers sporophores, constituant la première levée, a été observée entre le 10e et le 12e jour de l’induction fructifère, et l’intervalle entre deux levées successives a été de 6 à 7 jours. Le rendement moyen d’Auricularia cornea (souche 180513) était de 20,11 % sur le substrat SD1 et de 8 % sur le substrat SD2 (tableaux 2 A et 2 B). Dans ce cas, le résultat met en évidence l’intérêt de l’ajout du son de blé. En revanche, pour le Pleurotus sajor-caju (souche 1259), les valeurs pour les deux substrats étaient proches (12,52 % sur SD1 et 10,05 % sur SD2).
Tableau 2. Rendements de production des sporophores d’Auricularia cornea sur SD1 et sur SD2
|
Levées
|
|
|
L1
|
L2
|
|
NSO
|
SU
|
IS
|
PSD
(g)
|
P1SF
(g)
|
P2SF
(g)
|
PTSF
(g)
|
RDT
(%)
|
RDM±SD
(%)
|
|
1
8
0
5
1
3
|
SD1
|
1
|
630
|
107
|
49
|
156
|
24,76
|
20,11±3,98
|
|
2
|
630
|
108
|
52
|
160
|
25,39
|
|
3
|
630
|
60
|
28
|
88
|
13,96
|
|
4
|
630
|
87
|
36
|
123
|
19,52
|
|
5
|
630
|
76
|
54
|
130
|
20,63
|
|
6
|
630
|
81
|
32
|
113
|
17,93
|
|
7
|
630
|
72
|
45
|
117
|
18,57
|
|
SD2
|
1
|
630
|
12
|
24
|
36
|
5,71
|
8±6,27
|
|
2
|
630
|
48
|
31
|
79
|
12,53
|
|
3
|
630
|
74
|
42
|
106
|
16,82
|
|
4
|
630
|
-
|
12
|
12
|
1,90
|
|
5
|
630
|
59
|
27
|
88
|
13,96
|
|
6
|
630
|
-
|
14
|
14
|
2,22
|
|
7
|
630
|
-
|
18
|
18
|
2,85
|
PSD : Poids de substrat défini.
14Le tableau 2 présente les rendements moyens (n = 7 répétitions) en sporophores d’Auricularia cornea (souche 180513) pour deux levées. Le test-t de Student met en évidence une différence significative entre les rendements en sporophores d’Auricularia cornea récoltés sur les deux substrats (t = 4,312 ; p = 0,001).
Tableau 3. Rendements de production des sporophores de Pleurotus sajor-caju sur SD1 et sur SD2
|
Levées
|
|
|
L1
|
L2
|
L3
|
L4
|
|
|
|
|
|
NSO
|
SU
|
IS
|
PSD
|
P1SF
(g)
|
P2SF
(g)
|
P3SF
(g)
|
P4SF
(g)
|
PTSF
(g)
|
RDT
(%)
|
RDM±SD
(%)
|
|
1
2
5
9
|
SD1
|
1
|
525
|
38
|
16
|
5
|
4
|
63
|
12
|
12,53±2,12
|
|
2
|
525
|
28
|
21
|
16
|
5
|
70
|
13,3
|
|
3
|
525
|
39
|
19
|
12
|
7
|
77
|
14,66
|
|
4
|
525
|
24
|
15
|
6
|
3
|
48
|
9,14
|
|
5
|
525
|
31
|
21
|
11
|
9
|
72
|
13,71
|
|
SD2
|
1
|
525
|
19
|
18
|
13
|
7
|
57
|
10,85
|
10,05±1,25
|
|
2
|
525
|
15
|
18
|
6
|
3
|
42
|
8
|
|
3
|
525
|
19
|
19
|
11
|
10
|
59
|
11,23
|
|
4
|
525
|
18
|
20
|
12
|
3
|
53
|
10,09
|
|
5
|
525
|
24
|
18
|
8
|
3
|
53
|
10,09
|
PSD : Poids de substrat défini ; IS : Identification substrat (ou numéro de répétition) ; P3SF : Poids des sporophores frais à la troisième levée ; L1 : Première levée ; P4SF : Poids des sporophores frais à la quatrième levée è L2 : Deuxième levée ; PTSF : Poids total des sporophores frais ; L3 : Troisième levée ; RDM : Rendement moyen de répétitions par substrat ; NSO : Numéro souche ; RDT : Rendement par répétition ; P1SF : Poids des sporophores frais à la première levée ; SD : Standard de déviation (écart-type) ; P2SF : Poids des sporophores frais à la deuxième levée ; SD1 : Substrat mixte avec son de blé ; SD2 : Substrat mixte sans son de blé ; SU : Substrat
15Le tableau 3 présente les rendements moyens (n = 5 répétitions) en sporophores de Pleurotus sajor-caju pour quatre levées (résultats obtenus sur le substrat SD1 et sur le substrat SD2). L’analyse du test-t de Student montre qu’il n’existe pas de différence significative entre les rendements en sporophores de Pleurotus sajor-caju sur les deux substrats étudiés (t = 2,246 ; p = 0,055).
16Les teneurs des composants chimiques pour 100 g de matières fraîches des sporophores d’Auricularia cornea et de Pleurotus sajor-caju récoltés sur les deux substrats, sont présentées dans les tableaux 4 et 5.
Tableau 4. Composition chimique d’Auricularia cornea pour 100 g de matière fraîche
|
A1
|
A2
|
|
Éléments dosés
|
Composition (%)
|
|
Humidité
|
87,59 ± 3,24
|
86,24 ± 2,33
|
|
Protéines brutes
|
2,58
|
2,38
|
|
Lipides totaux
|
1,11
|
1,31
|
|
Hydrates de carbone
|
5,11
|
5,55
|
|
Fibres brutes
|
2,89
|
3,92
|
|
Cendres totales
|
0,70
|
0,59
|
|
Énergie (Kcal)
|
40,75
|
43,51
|
A1 : Auricularia cornea sur SD1 ; Kcal : kilocalorie ; A2 : Auricularia cornea sur SD2
Tableau 5. Composition chimique de Pleurotus sajor-caju pour 100 g de matière fraîche
|
P1
|
P2
|
|
Éléments dosés
|
Composition (%)
|
|
Humidité
|
80,10 ± 1,89
|
74,46 ± 1,56
|
|
Protéines brutes
|
3,30
|
3,71
|
|
Lipides totaux
|
2,32
|
2,21
|
|
Hydrates de carbone
|
9,33
|
16,27
|
|
Fibres brutes
|
2,95
|
1,21
|
|
Cendres totales
|
1,99
|
2,12
|
|
Énergie (Kcal)
|
71,4
|
99,81
|
P1 : Pleurotus sajor-caju sur SD1 ; Kcal : kilocalorie ; P2 : Pleurotus sajor-caju sur SD2
17Les teneurs des composants chimiques pour 100 g de matières sèches des sporophores d’Auricularia cornea et de Pleurotus sajor-caju récoltés sur les deux substrats, sont présentées dans les tableaux 6 et 7.
Tableau 6 Composition chimique d’Auricularia cornea pour 100 g de matière sèche
|
P1
|
P2
|
|
Éléments dosés
|
Composition (%)
|
|
Protéines brutes
|
20,79 ± 0,65
|
17,30 ± 0,35
|
|
Lipides totaux
|
9 ± 0,3
|
9,53 ± 0,35
|
|
Hydrates de carbone
|
41,19 ± 0,83
|
40,34 ± 1,92
|
|
Fibres brutes
|
23,36 ± 1,82
|
28,5 ± 3,5
|
|
Cendres totales
|
5,66 ± 0,57
|
4,33 ± 1,15
|
|
Énergie (Kcal)
|
328,92
|
316,33
|
Tableau 7. Composition chimique de Pleurotus sajor-caju pour 100 g de matière sèche
|
P1
|
P2
|
|
Éléments dosés
|
Composition (%)
|
|
Protéines brutes
|
16,6 ± 1,02
|
14,53 ± 0,49
|
|
Lipides totaux
|
11,66 ± 3,05
|
8,66 ± 4,04
|
|
Hydrates de carbone
|
46,91 ± 1,75
|
63,72 ± 2,54
|
|
Fibres brutes
|
14,83 ± 1,04
|
4,76 ± 1,56
|
|
Cendres totales
|
10
|
8,33 ± 2,51
|
|
Énergie (Kcal)
|
358,98
|
390,94
|
18La détermination de la composition chimique des matières fraiches (tableaux 4 et 5) et sèches (tableaux 6 et 7) des sporophores a permis d’évaluer principalement les protéines, les hydrates de carbone, les lipides, les cendres et la teneur en calories. Elle a également permis de montrer qu’il existe une variation entre les substrats et aussi entre les deux souches. En prenant en compte 100 g de matière fraiche sur les deux substrats (SD1 et SD2), les valeurs obtenues avec les champignons Pleurotus sajor-caju semblent plus élevées que celles obtenues avec Auricularia cornea (les protéines : 3,7 g contre 2,58 g, les lipides : 2,32 g contre 1,31 g, les hydrates de carbone : 16,27 g contre 5,11 g et la teneur en calories : 99,8 Kcal contre 43,5 Kcal). Pour 100 g de matière sèche, les protéines (20,9 g) et les fibres brutes (28,5 g) d’Auricularia cornea étaient plus élevées que celles de Pleurotus sajor-caju (16,6 g et 14,8 g respectivement). Les autres composés non énumérés sont repris dans les tableaux cités précédemment.
19L’analyse du test-t de Student montre que, sur les deux substrats, il n’existe pas, d’une part, de différence statistiquement significative entre les teneurs en humidité, en protéines brutes, en fibres brutes, en lipides totaux, en cendres totales et en hydrates de carbone des sporophores d’Auricularia cornea (t = 0,009 ; p = 0,993) et, d’autre part, entre ceux de Pleurotus sajor-caju (t = 0,446 ; p = 0,659).
20À noter que la culture d’Auricularia cornea sur les substrats contenus dans chaque sachet a provoqué une perte de masse totale du substrat mouillé SD1 de 59,63 % (soit 375,71 g par rapport à 630 g avant l’envahissement) et du substrat SD2 de 47,39 % (298,57 g par rapport à 630 g). Quant à la culture de Pleurotus sajor-caju, les pertes de masse ont été plus élevées, sur SD1 de 63,42 % (333 g par rapport à 525 g) et sur SD2 de 60,38 % (317 g par rapport à 525 g).
21Les déchets lignocellulosiques utilisés pour la préparation des substrats, à savoir les copeaux de bois, les rafles de maïs, le marc de café et la paille de riz, ont été soumis au compostage pendant deux mois. Ces déchets ont été enrichis ou non de son de blé. Nous avons voulu déterminer l’apport du son de blé au sein de ces substrats dans l’amélioration des rendements de production des sporophores de l’espèce sauvage Auricularia cornea (souche 180513) et de l’espèce exotique Pleurotus sajor-caju (souche 1259). Les résultats, obtenus en deux levées, montrent que le son de blé a permis d’augmenter le rendement moyen lors de la culture d’Auricularia cornea. En effet, le rendement est de 20,11 % pour du compost avec son de blé (SD1), alors qu’il n’est que de 8 % en l’absence de son de blé (SD2). Le son de blé aurait ainsi apporté des nutriments importants dans le développement du champignon, notamment une bonne dose d’azote. D’après Boudouma (2009), le son de blé est composé à 14,5 % de matière azotée, 10,6 % de cellulose, 28,4 % d’hémicellulose et 20,8 % d’amidon. Par ailleurs, Kurtzman et al. (1982) ont démontré que les sources de carbone adaptées à la croissance mycélienne sont l’amidon, le glucose, le fructose, le maltose, le mannose, le saccharose, la pectine, la cellulose et la lignine.
22Néanmoins, dans les mêmes conditions de culture, quel que soit le substrat, le rendement du Pleurotus sajor-caju (souche 1259) est inférieur (10,05 % et 12,52 %). Ceci montre que le rendement peut varier d’une souche à une autre ou d’une espèce à une autre en fonction du substrat et des conditions de culture (Oei, 2003).
23Seul le rendement moyen de 20,11 % d’Auricularia cornea, obtenu sur le substrat SD1, est satisfaisant, car il correspond au rendement consensuel de 20 % accepté pour qu’un substrat soit jugé bon pour la culture d’un champignon comestible après la récolte de trois levées (Oei, 2003). Nous avons obtenu ce rendement de 20 % après la récolte de deux levées. Malgré que le temps d’envahissement et les intervalles de temps entre les levées de deux souches soient très variables, l’harmonisation du nombre des levées donnerait une vision plus complète de productivité des souches et de méthodes de cultures. Selon Diansambu et al., 2016 ; Oei, (2005) ; Dibaluka (2012), le stock enzymatique libéré dans le substrat et la capacité de la souche à digérer son complexe lignocellulosique sont plus important pendant les trois premières levées.
24En ce qui concerne l’envahissement des substrats par les mycéliums : les deux espèces se sont comportées différemment. Pleurotus sajor-caju (souche 1259) a envahi complètement les deux substrats (SD1 et SD2) au bout de 27 jours d’incubation, alors qu’Auricularia cornea (souche 180513) n’a envahi totalement que le substrat SD1 et a envahi partiellement le substrat SD2 au bout de 32 jours. Cette différence d’envahissement des substrats par les deux espèces est certainement due à la différence d’équipement en enzymes (exoenzymes) des deux espèces (Oei, 1993).
25Auricularia cornea (souche 180513) a fourni pour 100 g de matière fraiche jusqu’à 2,6 % de protéines, ce qui est faible par rapport à Pleurotus sajor-caju (souche 1259) (3,7 %). Toutefois, l’Auricularia cornea (souche 180513) peut constituer une source protéique permanente dans l’alimentation locale, car sa teneur est conforme à la valeur moyenne des champignons variant entre 2 % et 3 % (Malaisse, 2010).
Figure 2. Composition chimique des sporophores d’Auricularia cornea récoltés sur les deux substrats (SD1 et SD2), comparée à celle des sporophores récoltés dans la nature et analysés par Ying et al. (1987)
26En comparant les résultats obtenus sur la composition chimique des sporophores d’Auricularia cornea récoltés sur les substrats (SD1 et SD2) que nous avons testés, à ceux de la souche sauvage d’Auricularia cornea analysée par Ying et al. (1987), nous constatons que les sporophores sur nos deux substrats renferment plus de protéines brutes, de lipides et de fibres brutes, mais moins d’hydrates de carbone et de cendres, avec respectivement 20,79 % (SD1), 17,3 % (SD2) contre 7,9 % pour les protéines brutes ; 9 % (SD1), 9,53 % (SD2) contre 1,2 % pour les lipides ; 41,19 % (SD1), 40,34 % (SD2) contre 84,2 % pour les hydrates de carbone ; 23,36 % (SD1), 28,5 % (SD2) contre 6,7 % pour les fibres brutes ; et 5,66 % (SD1), 4,33 % (SD2) contre 6,2 % pour les cendres (Ying et al., 1987). Ces différences constatées peuvent s’expliquer par le fait que l’Auricularia cornea, analysé par Ying et al. (1987), est une souche récoltée dans la nature et notre souche est un champignon cultivé artificiellement. Selon Sun et al., (2022), les différences des paramètres varient en fonction des facteurs climatiques locaux et des pratiques culturales.
27Pour les champignons séchés, la teneur en protéines est plus élevée pour l’Auricularia cornea (20,79 %) par rapport au Pleurotus sajor-caju (16,6 %). Certains auteurs ont rapporté des valeurs de 30,63 % pour Psathyrella tuberculata et 17,49 % pour Amanita rubescens (Soro, 2014).
- 3 Pour plus d’information, voir l’article de la biologiste Irina Selyutina [En ligne] URL : https://f (...)
28La teneur en lipides de la matière fraiche des deux espèces est de 1,1 % à 1,3 % et de 2,21 % à 2,3 % respectivement pour Auricularia cornea (souche 180513) et pour Pleurotus sajor-caju (souche 1259). Cela corrobore avec la moyenne qui varie entre 1,3 % et 2,7 %, pour 100 g de produit frais, dans les sporophores de la plupart des champignons comestibles (Selyutina, 2024)3. La teneur en lipides de matière sèche est de 8,66 % à 11,66 % et de 9 % à 9,53 % respectivement pour Auricularia cornea (souche 180513) et pour Pleurotus sajor-caju (souche 1259). Ces valeurs sont assez élevées si on les compare à celles de 4 % et 6,60 % trouvées chez Lentinus brunneofloccosus et Auricularia auricularia‑judae (Ekissi et al., 2021).
29Ces valeurs sur la composition chimique d’Auricularia cornea (souche 180513) situent ce champignon sauvage dans les sources alimentaires qui peuvent répondre aux besoins de la population locale.
30En ce qui concerne les analyses chimiques effectuées sur des sporophores récoltés sur les deux substrats SD1 et SD2, nous constatons que la teneur des différents éléments analysés a varié en fonction du substrat et en fonction de la souche (figure 3).
Figure 3. Composition chimique des sporophores de Pleurotus sajor-caju récoltés sur le substrat SD1, comparée à celle des sporophores de Pleurotus sajor-caju analysés par Goyal et al. (2006)
31L’analyse de la figure 3 montre que les sporophores de Pleurotus sajor-caju récoltés sur des déchets agricoles et industriels (Goyal et al., 2006) ont respectivement des teneurs, en protéines brutes, en lipides totaux, en hydrates de carbone, en fibres brutes et en cendres, de 25,65 %, 7,46 %, 52,46 %, 12,13 % et 1,96 %, tandis que les sporophores de la souche 1259 ont des teneurs de 16,6 %, 11,66 %, 46,91 %, 14,83 % et 10 % sur le substrat SD1, et de 14,53 %, 8,66 %, 63,72 %, 4,76 % et 8,33 % sur le substrat SD2. Ces résultats confirment aussi les affirmations de Sun et al., (2022) et de Bellettini et al., (2019) selon lesquelles plusieurs facteurs pourraient influencer ces différences, tels que les espèces de champignons, le substrat utilisé et la teneur en azote disponible dans le substrat de croissance.
32Cette étude a permis de mettre au point un substrat lignocellulosique afin d’évaluer l’adaptabilité d’Auricularia cornea (souche sauvage 180513) en culture artificielle, en comparant son comportement, dans les mêmes conditions de culture, à celui d’une souche exotique 1259 de Pleurotus sajor-caju déjà adaptée en culture. La combinaison des déchets dans la composition des substrats en présence de son de blé comme additif a donné des résultats positifs du point de vue du rendement et de la composition chimique. L’espèce Auricularia cornea (souche 180513) peut donc être conseillée pour sa domestication, à condition de poursuivre les recherches afin de trouver les conditions optimales de sa culture. L’adaptation en culture de la souche sauvage 180513 d’Auricularia cornea a été vérifiée par l’application du test-t de Student sur les rendements moyens en sporophores, qui nous a révélé une différence statistiquement significative avec comme facteur de variation le substrat de production, contrairement aux rendements en sporophores de Pleurotus sajor-caju qui ont montré une différence non significative. Les substrats tels que nous les avons conçus peuvent être inclus parmi les substrats de production d’Auricularia cornea pouvant permettre sa disponibilité de manière permanente, en quantité et en qualité. L’adaptation d’autres espèces sauvages devrait être envisagée en comparant leurs rendements et leur apport nutritionnel avec d’autres espèces déjà adaptées en culture, y compris Pleurotus sajor-caju. Il serait également envisageable de réaliser une culture sur chaque type de déchets utilisés dans ce travail avant de les incorporer dans un substrat complexe.